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质粒大量提取试剂盒

时间:2025-07-14   来源:未知    
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质粒大量提取试剂盒

◆质粒大量提取试剂盒目录号PL11使用手册实验室使用,

仅用于体外

质粒大量提取试剂盒

质粒大量提取试剂盒(离心柱型)

目录号:PL11

目录编号PL1101包装单位10次

适用范围:

适用于大规模高纯度质粒制备 试剂盒组成、储存、稳定性:

保存

-20℃

4℃

室温

室温

室温

室温

室温

室温试剂盒组成RNaseA(10mg/ml)溶液P1溶液P2溶液P3漂洗液WB洗脱缓冲液EB吸附柱DC收集管(50ml)10次µl750750µ75ml75ml110ml50ml第一次使用前按说明加指定量乙醇20ml10个10个

本试剂盒在室温储存12个月不影响使用效果。

质粒大量提取试剂盒

储存事项:

1.μg/ml)第一次使用时,将试剂盒所带全部的RNaseA加入溶液P1后(终浓度100100μ

置于4℃保存。如果溶液P1中RNaseA失活,提取的质粒可能会有微量RNA残留,在溶液P1中补加RNaseA即可。

2.环境温度低时溶液P2中SDS可能会析出出现浑浊或者沉淀,可在37℃水浴加热

几分钟,即可恢复澄清,不要剧烈摇晃,以免形成过量的泡沫。

3.避免试剂长时间暴露于空气中产生挥发、氧化、pH值变化,各溶液使用后应及时

盖紧盖子。

产品介绍:

本试剂盒采用改进SDS-碱裂解法裂解细胞,离心吸附柱内的硅基质膜在高盐、低pH值状态下选择性地结合溶液中的质粒DNA,再通过漂洗液将杂质和其它细菌成分去除,最后低盐、高pH值的洗脱缓冲液将纯净质粒DNA从硅基质膜上洗脱。

1.产品特点:离心吸附柱内硅基质膜全部采用进口世界著名公司特制吸附膜,柱与柱之间吸附

量差异极小,可重复性好。克服了国产试剂盒膜质量不稳定的弊端。

2.不需要使用有毒的苯酚、氯仿等试剂,也不需要乙醇沉淀。快速、方便,从

100-200ml大肠杆菌LB((Luria-Bertani)培养液中,可快速提取0.2-0.5mg纯净的高拷贝质粒DNA,提取率达80%左右。

3.获得的质粒产量高、超螺旋比例高、纯度好,可以直接用于酶切、转化、PCR、

体外转录、测序等各种分子生物学实验。

质粒大量提取试剂盒

1.注意事项所有的离心步骤如未加另外说明均在室温完成,使用转速可以达12,000xg,带50ml

转头的台式离心机。

2.溶液P3中含有刺激性化合物,操作时要戴乳胶手套,避免沾染皮肤、眼睛和衣服。

若沾染皮肤、眼睛时,要用大量清水或者生理盐水冲洗。

3.提取质粒的量与细菌培养浓度、质粒拷贝数等因素有关。如果所提质粒为低拷贝

质粒或大于10kb的大质粒,应加大菌体使用量,同时按比例增加P1、P2、P3的用量,洗脱缓冲液应在70℃预热。可以适当的延长吸附和洗脱的时间,提高提取效率。

4.得到的质粒DNA可用琼脂糖凝胶电泳和紫外分光光度计检测浓度与纯度。OD260

值为1相当于大约50μg/mlDNA。电泳可能为单一条带,也可能为2条或者多条DNA条带,这主要是不同程度的超螺旋构象质粒泳动位置不一造成,与提取物培养时间长短、提取时操作剧烈程度等有关。本公司产品正常操作情况下基本超螺旋可以超过90%。

5.质粒DNA确切分子大小,必须酶切线性化后,对比DNA分子量Marker才可以知道。

处于环状或者超螺旋状态的质粒,泳动位置不确定,无法通过电泳知道其确切大小。

6.洗脱液EB不含有螯合剂EDTA,不影响下游酶切、连接等反应。也可以使用水洗

脱,但应该确保pH大于7.5,pH过低影响洗脱效率。用水洗脱,质粒应该保存-20℃。质粒DNA如果需要长期保存,可以用TE缓冲液洗脱(10mMTris-HCl,1mMEDTA,pH8.0),但是EDTA可能影响下游酶切反应,使用时可以适当稀释。

质粒大量提取试剂盒

操作步骤:(实验前请先阅读注意事项)

提示:

第一次使用前请先在漂洗液WB瓶中加入指定量无水乙醇,充分混匀,加入后请及时在方框打钩标记已加入乙醇,以免多次加入!

将RNaseA全部加入溶液P1中,混匀。每次使用后置于2-8℃保存。

将溶液P3放在冰上预冷。

1.取150-200毫升过夜培养的菌液,12,000xg,离心1-2分钟,尽可能的倒干上清,

收集菌体。

收集超过50毫升菌液,可以离心弃上清后,在同一个50ml管内加入更多的菌液,重复步骤1,直到收集到足够的菌体。

2.用7ml溶液P1重悬菌体沉淀,移液器吹打或者涡旋振荡至彻底悬浮。

如果有未彻底混匀的菌块,会影响裂解,导致提取量和纯度偏低。

3.加7ml的溶液P2,温和地上下翻转4-7次使菌体充分裂解,室温放置3-5分钟。

温和地混合,不要剧烈震荡,以免基因组DNA剪切断裂!所用时间不应超过5分钟!以免质粒受到破坏。此时菌液应变得清亮粘稠。如果很浑浊,可能由于菌体过多,裂解不彻底,应减少菌体量。

4.加10ml溶液P3,立即温和地上下翻转4-7次,充分混匀此时会出现白色絮状沉

淀。室温或者冰上静置5分钟,4℃,12,000xg离心15分钟,小心取上清,避免吸取到漂浮的白色沉淀。

加入溶液P3后应该立即混匀,以免产生SDS的局部沉淀,如果上清中还有飘浮白色沉淀,可再次离心后取上清。

5.

6.可选(一般不需要做):4℃,12,000xg再次离心10分钟,小心取上清。将 …… 此处隐藏:1710字,全部文档内容请下载后查看。喜欢就下载吧 ……

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