一. 靶板的清洗
1.带上手套,将样品靶放入Lock_Lock盒中,倒入色谱纯级乙腈,溶剂浸没靶板,超声5-10分钟。
2.将溶剂换成色谱纯甲醇,浸没靶板,超声5-10分钟。
3.将溶剂换成50%甲醇+50%millipore纯水,超声5分钟。
4.将溶剂换成100%millipore纯水,超声5分钟。
5.将靶板取出,自然晾干即可。
注:如样品靶板特别脏,在第一步前用丙酮超声10分钟
二. 基质的选择
本实验室有以下三种基质选择
1.CHCA基质:5-10mg/ml (50%ACN,50%H2O,0.1%TFA) 多肽及小分子样品
2.DHB 基质:10-20mg/ml (50%ACN,50%H2O,0.1%TFA) 糖类及小分子样品
3.SA 基质:10-15mg/ml (50%ACN,50%H2O,0.1%TFA) 大于一万的蛋白及大分子样品
4.Dithranol基质:10-15mg/ml (100%THF,0.1%TFA) 聚合物样品
三.点样方式
1.混匀法: 样品及基质1:1的比例在Ep管内混合均匀,取1ul点靶,自然晾干。
2.覆盖法:移液枪取0.5ul样品,点靶,自然晾干。取0.5ul基质,覆盖到样品上,自然晾干。
3.三明治法:移液枪取0.5ul基质,点靶,等5-10s将基质吸走,形成基质的薄膜。取0.5ul样品,点靶,自然晾干。再取0.5ul基质点靶覆盖,自然晾干。
一般选用覆盖法点样。
